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細胞集落形成實驗-----古朵實驗
發布時間：2020-04-28瀏覽次數：1355返回列表
非整倍體細胞系和癌細胞株中，仍然存在不同細胞亞群，它們的功能和生長特點有些差異，其中有些亞群細胞對培養環境有較大的適應性和具有較強的獨li生存能力，細胞集落率高。純化細胞群來自一個共同的祖細胞，細胞遺傳性狀、生物學特性相似，利于實驗研究。原代培養細胞和二倍體有限細胞系，細胞集落率很低。細胞集落化培養之前，應先測定細胞集落形成率，以了解細胞在低密度條件下的生長能力。
目前認為僅有腫瘤干細胞具有形成集落的能力，集落抑制率常用于抗癌藥物敏感試驗、腫瘤放射生物學試驗。
集落抑制率=（1-（實驗組集落形成率/對照組集落形成率））×
（一）原理
細胞集落形成率 單個細胞在體外增殖6代以上，其后代所組成的細胞群體，稱為集落或克隆。每個克隆含有50個以上的細胞，大小在0.3-1.0mm 之間。集落形成率表示細胞獨li生存能力。常用方法有平板集落形成試驗、軟瓊脂集落形成試驗。
（二）實驗用品
1.材料：Hela細胞。
2.器材：（直徑 60mm ）培養皿、細胞記數板、燒杯、吸管、離心機、離心管、廢液瓶、倒置顯微鏡、二氧化碳培養箱、超凈工作臺、水浴鍋。
3.試劑：Giemsa染液、0.25%胰蛋白酶消化液、血清細胞培養液、安爾dian、瓊脂。
（三）方法
1.平板克隆形成試驗
本法適用于貼壁生長的細胞，包括培養的正常細胞和腫瘤細胞。
(1)對指數生長期細胞，采用常規消化傳代方法，制成細胞懸液。
(2)細胞懸液反復吹打，使細胞充分分散，單個細胞百分率應在95%以上。細胞記數，并用培養基調節細胞濃度，待用。
(3)根據細胞增殖能力，將細胞懸液倍比稀釋。一般按照每皿含50、100、200個細胞的濃度分別接種5ml細胞懸液到培養皿（直徑 60mm ）中，以十字方向輕輕晃動培養皿，使細胞分散均勻。
(4)培養皿置 37℃ 、5%CO2中培養2~3周，中間根據培養液pH變化適時geng換新鮮培養液。
(5)當培養皿中出現肉眼可見克隆時，終止培養，棄去培養液，PBS液小心浸洗2次，空氣干燥。甲醇固定15分鐘，棄甲醇后空氣干燥。用Giemsa染液染色10分鐘，流水緩慢洗去染液，空氣干燥。
2.軟瓊脂集落形成試驗
本法適用于非錨著依賴性生長的細胞，如骨髓造血干細胞、腫瘤細胞株、轉化細胞系。利用瓊脂液無粘著性又可凝固的特性，將腫瘤細胞混入瓊脂液中，瓊脂液凝固使腫瘤細胞置于一定位置，瓊脂中腫瘤細胞可能向周圍作quan方位的移動，因此可以用來檢測腫瘤細胞的主動移動能力。腫瘤細胞在適宜培養基中又可以增殖，從而可以測定腫瘤細胞克隆形成率。造血系統軟瓊脂集落形成試驗方法相同，主要用于有關細胞分化的研究，但使用培養基不同。
（1）同上（1）~（3）步驟。
（2）調整細胞懸液密度為1×103個/ml細胞。
（3）制備底層瓊脂，完全溶化的5%瓊脂和 37℃ 左右預溫的新鮮完全培養液以1：9比例在 40℃ 均勻混合，加入培養皿（直徑 60mm ）中，每皿含0.5%瓊脂培養基2ml，室溫下瓊脂完全凝固。
（4）制備上層瓊脂,取 37℃ 不同密度梯度(按照每皿含50、100、200個)的細胞懸液1.5ml移入小燒杯中，加入 40℃ 、5%瓊脂等體積混勻，即成0.25%半固體瓊脂培養基。配好的半固體瓊脂培養基立即加入鋪有底層瓊脂的培養皿中，室溫下瓊脂凝固。 37℃ 、5%CO2靜置培養2-3周。
（四）實驗結果
1.定期觀察細胞培養過程中集落的形成。
2.顯微鏡下計數大于50個細胞克隆數，然后按下式計算集落形成率：
集落形成率（%）=（集落數/接種細胞數）×100
（五）注意事項
1.瓊脂對熱和酸不穩定，如果反復加熱，容易降解，產生毒性，同時瓊脂硬度下降。故瓊脂高壓滅菌( 10磅 15分鐘)后按一次用量進行分裝。
2.細胞懸液中，細胞分散度>95%。
3.軟瓊脂培養時，注意瓊脂與細胞混合時溫度不要超過 40℃ ，以免燙傷細胞。
4.接種細胞密度不宜過高。
5.細胞在低密度條件下培養，生存率明顯下降，細胞系和腫瘤細胞株克隆形成率一般在10%以上。但初代培養細胞和有限細胞系僅為0.5~5%,甚至為零。為提高集落形成率，必要時在培養基中添加胰島素、地塞米松等促細胞克隆形成物質。
（六）復習思考題
比較平板克隆形成試驗和軟瓊脂集落形成試驗的異
