SYA560 高致病性豬藍(lán)耳病毒
- 產(chǎn)品/服務(wù)：SYA560 高致病性豬藍(lán)耳病毒
- 型 號：SYA560
- 品 牌：百奧萊博
- 單 價：面議
- 更新日期：2023-05-06
- 有效期至：長期有效
- 瀏覽次數(shù)：1167
產(chǎn)品簡介
高致病性豬藍(lán)耳病毒由專業(yè)試劑供應(yīng)商北京百奧萊博提供，用于科研目的，我公司的高致病性豬藍(lán)耳病毒品質(zhì)上佳，經(jīng)過多年的開發(fā)生產(chǎn)，已然非常成熟，歡迎廣大新老客戶訂購。...
產(chǎn)品詳細(xì)介紹
特別提示：包括高致病性豬藍(lán)耳病毒(hp-PRRSV)單重凝膠PCR檢測試劑盒在內(nèi)，本公司的所有產(chǎn)品僅可用于科研實(shí)驗(yàn)，嚴(yán)禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途！
產(chǎn)品名稱：高致病性豬藍(lán)耳病毒(hp-PRRSV)單重凝膠PCR檢測試劑盒
產(chǎn)品貨號：SYA560
產(chǎn)品規(guī)格：48次/盒
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名稱：禽流感病毒(AIV-M)通用型單重?zé)晒釶CR檢測試劑盒（定性/定量）
貨號：SYA320
規(guī)格：48次/盒|96次/盒
一、簡介：
禽流感病毒實(shí)時熒光qRT-PCR檢測試劑是按照美國農(nóng)業(yè)部(USDA)的檢測標(biāo)準(zhǔn)和我國《禽流感病毒通用熒光RT-PCR檢測方法》(GB/T 19438.1-2004)而制備的商業(yè)化檢測試劑盒。本試劑盒為中的探針報告基團(tuán)為6-FAM，淬滅基團(tuán)為MGB。本方法可定性檢測所有亞型禽流感病毒。
二、用途：
本試劑盒適用于檢測各種禽類喉咽棉拭子、泄殖腔棉拭子、各種組織樣品、尿囊液及細(xì)胞培養(yǎng)液等。可用于禽流感病毒感染的輔助診斷、監(jiān)測及流行病學(xué)調(diào)查，其檢測結(jié)果僅供參考。
三、試劑盒組成：(48T)
組份 數(shù)量 規(guī)格
熒光qRT-PCR反應(yīng)液(AIV-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
無核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
陰性對照(NTC) 1 管 50μL/管
陽性對照(AIV-PTC) 1 管 50μL/管
四、儲存條件及有效期：
本試劑盒于-18℃以下保存，有效期為6個月。
五、熒光PCR儀器適用范圍：
ABI系列，Roche系列等熒光定量PCR檢測儀等。
六、樣品的采集與RNA提取
6.1 樣品的采集
按照標(biāo)準(zhǔn)《高致病性禽流感診斷技術(shù)》(GB/T 18936-2003 )和《禽流感病毒通用熒光RT-PCR檢測方法》(GB/T 19438.1-2004 )進(jìn)行樣品的采集。
6.2 樣品RNA提取
可按常規(guī)方法提取，也可采用商品化試劑盒提取病毒RNA。
（1） 取滅菌的1.5 mL Eppendorf離心管，做好標(biāo)識。
（2） 每管加入600 μL裂解液，分別加入被檢樣本200 μL，再加入200 μLlǜ仿，混勻器上振蕩混勻5 s，于4℃ 12000 r 離心15 min。
（3） 取無RNA酶的1.5 mL Eppendorf離心管，加入-20℃預(yù)冷400μL異丙醇，吸取步驟(2)各管中的上清液轉(zhuǎn)移至相應(yīng)的管中，避免吸出中間層，顛倒混勻。
（4） 于4℃ 12000 r離心15 min，棄上清，倒置于吸水紙上，沾干液體；加入600μL 75％預(yù)冷乙醇，洗滌。
（5） 于4℃ 12000 r離心10 min，棄上清，倒置于吸水紙上，沾干液體。
（6） 10000 r離心10 s，用微量加樣器將其吸干，室溫干燥5 min～10 min。
（7） 加入10μL 無核酸降解酶的水，溶解管底的RNA，5000 r離心5 s，冰上保存?zhèn)溆谩Ｈ粜栝L期保存須放置-70℃ 冰箱。
注：陽性對照和陰性對照為已經(jīng)抽提好的核酸(無需提取)，直接取5μL加入到反應(yīng)體系中即可。由于陽性對照濃度較高，建議zuì后在樣品制備區(qū)域加入陽性對照。
七、檢測步驟：
7.1 試劑的準(zhǔn)備
從試劑盒中取出熒光qRT-PCR反應(yīng)液(AIV-qRT-PCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX)，冰上融化并振蕩混勻后，10000rpm離心10s。
設(shè)所需要的PCR反應(yīng)管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1管陰性對照+1管陽性對照)，每個測試反應(yīng)體系配制如下表：
試劑 每個反應(yīng)加入的量 N個反應(yīng)加入的量
熒光PCR反應(yīng)液 14μL N×14μL
酶混合物 1 μL N×1 μL
總量 15 μL N×15μL
計算好各試劑的使用量，加入一適當(dāng)體積潔凈離心管中，充分混勻，10000r離心10s，向設(shè)定的N個PCR反應(yīng)管中分別加入15μL，向每管中加入處理后樣品或陰性對照(NTC)和陽性對照(AIV-PTC)5μL，10000rpm瞬時離心10秒。
7.2 real time RT-PCR反應(yīng)條件
將各反應(yīng)管放入定量PCR儀器的反應(yīng)槽內(nèi)。
推薦循環(huán)條件:
反轉(zhuǎn)錄(Reverse Trans
預(yù)變性 1循環(huán) 94℃ for 30 sec
PCR擴(kuò)增(PCR amplification ) 40循環(huán) 94℃ for 5 sec
60℃ for 30 sec
在60℃延伸時收集熒光信號 。報告基團(tuán)：設(shè)置為FAM。
八、結(jié)果分析：
8.1 結(jié)果分析條件設(shè)定
直接讀取檢測結(jié)果。基線和閾值設(shè)定原則根據(jù)儀器噪聲情況進(jìn)行調(diào)整，以閾值線剛好超過正常陰性樣品擴(kuò)增曲線的zuì高點(diǎn)為準(zhǔn)。
8.2 試驗(yàn)成立判定
（1） 陰性對照(NTC)：不應(yīng)產(chǎn)生任何的擴(kuò)增曲線。
（2） 陽性對照(AIV -PTC)：均產(chǎn)生擴(kuò)增曲線。
（3） 以上條件應(yīng)同時滿足 ，否則，此次試驗(yàn)視為無效。
8.3 結(jié)果判定
（1） 在試驗(yàn)成立的條件下，Ct值≤35的樣本為陽性，表明AIV核酸陽性。
（2） Ct值顯示為無的樣本為陰性樣本，表明AIV核酸陰性。
（3） 如果35＜Ct值≤40，判為可疑樣品。對于可疑樣品，先看擴(kuò)增曲線。如果擴(kuò)增曲線為對數(shù)擴(kuò)增曲線，則為可疑陽性，否則判為陰性。
（4） 對于可疑陽性樣品，重新抽提核酸，再次進(jìn)行AIV qRT-PCR檢測。如果重復(fù)擴(kuò)增曲線為對數(shù)擴(kuò)增曲線，判為樣本陽性，表明AIV核酸陽性；否則判為樣本陰性。
九、注意事項(xiàng)：
（1） 初次使用前請仔細(xì)閱讀說明書。并嚴(yán)格按照說明書步驟操作。
（2） 所有使用的離心管zuì好高壓滅菌，而且必須不含RNA酶。
（3） PCR操作應(yīng)嚴(yán)格按照要求分區(qū)(試劑配制區(qū)、標(biāo)本處理區(qū)、PCR擴(kuò)增區(qū)等)，防止實(shí)驗(yàn)室污染。
（4） 樣本提取、試劑配置、加樣需在不同區(qū)的超凈工作臺進(jìn)行，以免污染。
（5） 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對待，并按照衛(wèi)生部《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。
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